Microscope confocal inversé motorisé pour imagerie biologique

Université de Caen Normandie
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Fiche synthétique du marché public. Analyse détaillée et points essentiels du DCE.

Date limite
16 juin 2026 à 10 h
Localisation
Caen (14)
Durée
Non précisé
Budget
Non précisé

Description technique générale

Objet

  • Fourniture, installation, mise en service et formation d'un microscope confocal inversé motorisé pour imagerie biologique, complet, intégré et évolutif, capable d'acquisitions multi-canaux et multidimensionnelles (XYZT) et d'expérimentations sur cellules vivantes et échantillons fixés.

Statif et motorisations

  • Statif inversé motorisé avec pilotage logiciel intégral.
  • Motorisation axe Z haute précision, tourelle d'objectifs motorisée et tourelle de filtres motorisée.
  • Systèmes de sécurité laser intégrés.

Platine et navigation

  • Platine XY motorisée pilotable par le logiciel, supportant acquisitions multi-positions et mosaïque (stitching) avec déplacement minimal spécifié de 120 × 90 mm.
  • Système de navigation macroscopique pour visualisation globale du porte-objet, incluant caméra haute sensibilité utilisable en épifluorescence.

Sources d'excitation et lasers

  • Source d'épifluorescence LED comportant au moins 4 longueurs d'onde adaptées (DAPI, GFP, Rhodamine, Cy5) et jeux de filtres associés.
  • Intégration d'au moins 6 lasers couvrant approximativement 405 nm, 460 nm, 488 nm, 515 nm, 560 nm et 640 nm.

Tête confocale et performances d'acquisition

  • Tête confocale à balayage rapide avec vitesse minimale demandée ≥ 10 images/s.
  • Détection incluant au moins 6 détecteurs haute sensibilité et option de détection spectrale pour séparation de fluorophores et analyse d'autofluorescence.
  • Détecteur de transmission inclus.
  • Propositions pour amélioration résolution spatiale (matériel et/ou logiciel) avec descriptions attendues des performances XY et Z.

Objectifs et supports d'échantillons

  • Fourniture d'objectifs couvrant au minimum: 5×, 20×, 40× (objectifs pour cellules vivantes/immersion), 40× longue distance, et 60×/63× huile haute NA, adaptés à la fluorescence et au confocal.
  • Compatibilité et adaptateurs pour lames plastiques, boîtes de culture 35 mm, plaques multi-puits et lames type IBIDI multi-puits (≈25 × 75 mm).

Incubation et conditions d'expérimentation in vitro

  • Chambre d'incubation avec contrôle température, CO2 et humidité, enceinte noire à large ouverture et insert platine compatible boîtes multi-puits et lames multi-puits.

Informatique et logiciel

  • Station informatique dédiée au pilotage avec stockage adapté et écran 32" (ou double écrans équivalents), configuration assurant pilotage fluide de tous les modules.
  • Logiciel d'acquisition et d'analyse prenant en charge multicanal, time series, Z-stack, FRAP/FRET, acquisitions multi-positions, mosaïque, autofocus logiciel, automatisation des acquisitions, traitement (débruitage, séparation spectrale) et traitement en temps réel pendant acquisition.

Supports mécaniques et stabilité

  • Table anti-vibrations dimensionnée pour le poids et stabilité du système; ordinateur et écran sur bureau séparé.

Formation, maintenance et évolutivité

  • Formation sur site pour un groupe maximal de 5 personnes couvrant utilisation et maintenance de premier niveau.
  • Évolutivité matérielle et logicielle : possibilités d'ajout de modules et mises à jour.
  • Options proposées : logiciel de profilométrie/microscopie corrélative (PSE1), extension de garantie (PSE2) et extension de maintenance (PSE3) chacune avec durée minimale proposée de 4 ans pour PSE2/PSE3.

Exigences de performance et documentation

  • Fournir descriptions et spécifications détaillées des performances des détecteurs (rapport signal/bruit, sensibilité), résultats attendus d'amélioration de résolution (XY, Z), et compatibilité logicielle pour les fonctionnalités demandées.

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