Analyses métagénomiques et métabarcoding d'ADN de sols

Centre de coopération internationale en recherche agronomique pour le développement
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Fiche synthétique du marchés public. Analyse détaillée et points essentiels du DCE.

Date limite
27 novembre 2025 à 10 h
Localisation
La Réunion (974)
Durée
1 an (05/01/2026 - 05/01/2027)
Budget
Non précisé

Description des prestations — Lot 1

Objectif analytique

  • Réalisation d'analyses métabarcoding multi‑marqueurs et estimation du ratio bactéries / champignons par qPCR sur extraits d'ADN issus de sols.

Échantillons et exigences sur l'ADN

  • Traitement d'un lot de 640 extraits d'ADN (620 échantillons terrain + 20 témoins positifs) fournis sous forme d'ADN extrait, conditionné (microplaques ou tubes à vis), déshydraté.
  • Le titulaire doit préciser la quantité minimale d'ADN total requise par échantillon pour permettre l'analyse multi‑marqueurs et les qPCR.
  • Aucune extraction initiale d'ADN n'est attendue sauf disposition contraire convenue.

Méthodes et protocoles analytiques

  • Métabarcoding sur 5 marqueurs avec exigences techniques précises (amorce, taille approximative d'amplicon et profondeur minimale souhaitée) :
    • Protistes (Cercozoaires) — 18S rRNA V4 — amorces S616F_Cerco / S616F_Eocer - S963R_Cerco ou S947R_Cerco — ~350 pb — profondeur > 60 000 reads.
    • Champignons — 18S rRNA V7–V8 — amorces FR1 - FF390 — ~385 pb — profondeur > 60 000 reads.
    • Archées — SSU V1–V2 — SSU1ArF - SSU520R — ~519 pb — profondeur > 60 000 reads.
    • Procaryotes (Bactéries) — 16S rRNA V4–V5 — F479 - R888 — ~410 pb — profondeur > 60 000 reads.
    • Eucaryotes (Nématodes) — 18S rRNA V4 — 3NDf - 1132r — ~570 pb — profondeur > 60 000 reads.
  • qPCR : estimation du ratio ADN bactérien / ADN fongique pour l'ensemble des 640 extraits (forfait unique). Procédure qPCR à détailler (amplification, standards, courbes, contrôles, réplicas, seuils de quantification/limite de détection).
  • Le titulaire doit décrire complètement la procédure d'élaboration des librairies (pré‑amplification si nécessaire, indices/barcoding, normalisation), les contrôles inclus (techniques, négatifs, positifs, réplicas analytiques, spike‑ins éventuels) et les modalités de séquençage.

Profondeur de séquençage, contrôles et reprise

  • Respect des profondeurs minimales indiquées par marqueur ; proposition d'une profondeur finale adaptée à la fois technique et économique.
  • Modalités de contrôle qualité à fournir : seuils d'acceptation, gestion des échantillons hors spécification, procédure de reprise en cas de non‑conformité.

Bioinformatique et données remises

  • Chaîne complète incluse : retrait des amorces, démultiplexage, nettoyage, assemblage/alignement, filtrage, assignement taxonomique. L'approche ASV est privilégiée ; justification et détails des choix logiciels et bases de référence à fournir.
  • Remise des données brutes (.fastq forward et reverse séparés par amorce et par échantillon) et des données traitées (tables ASV/OTU .xlsx, table des séquences propres avec assignements taxonomiques).

Livrables exigés

  • Rapport méthodologique et synthétique (.pdf et .docx) comprenant protocoles détaillés, contrôle qualité, limites de la méthode et représentations graphiques/tableaux des résultats.
  • Fichiers bruts .fastq et fichiers traités, tables ASV/OTU par échantillon (.xlsx).
  • Détail des prestations facturées selon postes (préparation librairies par groupe de marqueurs, qPCR ratio, bioinformatique, rapport, partage de fichiers).

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